国自然2023热点——植物小RNA高分新宠phasiRNA | 转录调控专题
植物小RNA研究目前仍然诸多高分文章的常客,尤其是一些顶级植物学期刊上,关于植物小RNA的研究近些年热度仍然是居高不下。小RNA在植物中参与调控一系列重要的生命活动,包括植株生长发育、胁迫因子应答和抵御病原菌入侵等。小RNA大家族包含microRNA (miRNA)、ta-siRNA/phasiRNA(trans-acting/phased siRNA)、nat-siRNA(natural antisense siRNA)、hc-siRNA(heterochromatic siRNA)。
这些已发表的小RNA研究,大部分仍然聚焦在miRNA上。2019年-2022年,联川生物总计协助客户发表超过110篇植物小RNA研究,每篇研究平均影响因子超过6.7分。但是绝大部分为miRNA方向,仅有2篇phasiRNA相关研究发表。
但是这2篇仅有的phasiRNA研究,一篇发表在了Nature Communications,另一篇发表在了Plant Biotechnology Journal。都属于植物学的顶级期刊。此外2022年发表的诸多小RNA研究中,phasiRNA高分文章就达到了12篇以上,包括Plant Cell、Plant Biotechnology Journal、New Phytologist等杂志。
那么这个phasiRNA究竟是何方神圣,又是如何成为高分文章收割机的?本文,小编就带你了解下phasiRNA以及国自然申请的若干注意事项。
想要依靠创新性,申请到国自然,phasiRNA绝对是利器。
参与介导生成tasiRNA的蛋白主要包括RDR3、SGS3、DCL4、AGO1、AGO7等。但后来发现有些tasiRNA还可以对下游的转录本进行具有顺式调控作用,因此tasiRNA由更为广泛的“phased siRNA”来替代,即phasiRNA。这里的这里“phased”一词表示小RNA是从头到尾依次裂解产生的。
标准的phasiRNA和ta-siRNA实际上很容易区分,因为当phasiRNA由非编码转录物产生并在局部区域外发挥作用时,它们被称为ta-siRNA。所以上图能够非常容易帮助大家区分四类siRNA在彼此之间的包含关系。
想要在植物体内生成phasiRNA,一般有两种经典模式,即“one-hit”模式和“two-hit”模式。近些年还出现了升级版的one-hit模式,即Updated one-hit模式。
无论是one-hit还是two-hit,前期ta-siRNA和phasiRNA前体分别由植物RNA聚合酶Pol II从基因座上分别转录出编码蛋白的mRNA及非编码RNA的转录本。随后这些转录本通过THO/TREX蛋白复合物从细胞核转运至细胞质,继而被运输至AGO蛋白(Argonate)催化中心,在下一步就会成为miRNA靶向剪切的模板RNA。miRNA在切割模板RNA时,会先产生小RNA前体随后被RDR6和SGS3放大为dsRNA复合物,随后dsRNA被DCL4和DRB4加工成若干条次级siRNA,即phasiRNA。
但是one-hit和two-hit究竟有何不同呢?
如果miRNA长度为22nt或含有miRNA*的凸起结构,则符合one-hit模型,即miRNA对靶向的RNA只有单个靶向剪切位点并通过AGO1切割,然后从3’端向其靶位点方向裂解mRNA产生phasiRNAs
而two-hit模型中miRNA长度为21 nt且有针对靶向的RNA有2个靶向剪切位点,但是即便2个靶向位点都与AGO7蛋白中的miRNA互作,最终只有一个位点可以被切割。裂解仅发生在3’端位点上,即从5’端向3’端靶位点方向依次裂解产生phasiRNA。
近些年还出现了one-hit升级版,即updated one-hit模型。即使在没有切割事件的情况下,miRNA和靶序列之间的相互作用足以诱导AGO1或AGO7产生次级siRNA。
无论是one-hit还是two-hit产生的小RNA片段,随后如同前面描述的那样在RDR6和SGS3保护和扩增下,形成dsRNA。这些dsRNA随后分别被DCL1、DCL4及DCL3b蛋白处理,这些DCL家族蛋白具体功能如下所述:
① DCL4介导21nt siRNA生成,这些siRNA被AGO1蛋白复合物招募以介导靶mRNA的切割或诱导次级siRNA的生成。
② DCL1也介导21nt siRNA生成,但这些siRNA被结合到AGO4分支蛋白中,以介导其自身DNA位点的甲基化。
③ DCL3家族蛋白如DCL3b等介导24nt siRNA生成,这些siRNA可与AGO1结合以切割靶序列或与AGO4结合以进行DNA甲基化。无论是AGO1还是AGO4生成的反式活性ta-siRNA和phasiRNA是否介导DNA甲基化修饰的机制目前仍不清楚。
用于产生phasiRNA的基因座称之为PHAS。植物PHAS基因座可根据其基因组来源分为两大类:在产生lncRNA的非编码区域内发现的PHAS基因座,以及位于蛋白质编码基因内的PHAS基因座。
在迄今为止在陆地植物中鉴定的所有PHAS基因座中,miR390-TAS3-ARF途径是最保守和最典型的。因此TAS3可以说是植物中最保守的lncRNA。植物中的PPR基因产生大量的phasiRNA,尤其是在真双子叶植物中。PPR phasiRNA的生成途径包括许多不同的触发miRNA。另一个相对高度保守的phasiRNA通路是miR828-TAS4-MYB模块。这种调节通路广泛存在于种子植物中,但可能在一些单子叶植物谱系中丢失。24nt长度且与生殖相关的phasiRNA通路广泛存在于真双子叶植物中。
上图所展示的是主流的phasiRNA所对应的生成模式、基因座、靶基因以及物种信息汇总。
目前phasiRNA的相关研究报道仍然不多,仍然处于未开垦的蓝海领域。根据已发表的文献来看,phasiRNA下游功能和机制研究主要集中在抗病研究、逆境胁迫、植物发育等几个主要的领域。
① 抗病研究方向
植物在进化的过程中产生了诸多能够抵御病原微生物侵染的R基因,如NLR基因等。激活这些基因座上源源不断产生phasiRNA的miRNA就显得非常重要。
案例1:豆科植物中的miR1507和miR1510,茄科物种中的miR6019和miR6027,大麦和小麦中的miR9863能够调节NLR蛋白的MLA基因继而产生大量下游的phasiRNA。
案例2:此外拟南芥中的PPR基因上的phasiRNA也参与植物免疫调节。当拟南芥被灰霉病感染时,来自TAS1c和TAS2的tasiRNA从植物宿主转运至真菌病原体内,从而诱导真菌致病基因的沉默。
② 逆境胁迫方向
案例1:拟南芥TAS1基因的miR173触发的PhasiRNA靶向参与耐热性的两个基因HTT1和HTT2。过表达TAS1促进了tasiRNA的积累,导致耐热性降低。
案例2:豆科植物miR1514a在干旱胁迫期间触发NAC700产生phasiRNA。在水分充足的条件下,NAC700TF调节参与正常代谢和生长的下游基因。然而在缺水的情况下,miR1514a抑制NAC700和NAC700衍生的phasiRNAs。
③ 生殖发育方向
已知在植物的花药中存在大量的phasiRNA,这些phasiRNA仅有极少部分的功能被解析。例如水稻的花药中发现了大量生殖相关且长度在21nt和24nt的phasiRNA及lncRNA前体基因座。miR2118用于激活21nt的phasiRNA,miR2275用于激活24nt的phasiRNA。但是这些miRNAs和phasiRNA在其他部位并未表达。这些RNA在不同单子叶植物中高度保守,所以表达上具有时空性的phasiRNA在部分单子叶植物的早期生殖发育中发挥重要作用。
上图是近些年已发表的与生殖相关的phasiRNA研究。
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已知在2021-2022年获批的诸多植物小RNA国自然基金标书中,其中有2个方向是前文中提及的:生殖发育与病原微生物抗性研究。所以作物学、果树学、园艺学、植物保护病理方向、植物生理学等方向研究的老师,可以多多关注phasiRNA,在创新性上优于传统的miRNA研究。
在选材上,病毒、真菌、细菌等侵染的部位,抗旱抗寒以及重金属胁迫的根部和叶片,花(花萼、花冠、雄蕊和雌蕊),果实,种子可以优先考虑。
锁定材料后,在实验设计上既可以遵循经典比较组vs处理组的原则,也可以在不同时间段处理的维度上进行关注。
拿到感兴趣的预实验材料后,可采用转录组测序+小RNA测序+降解组测序的方式,初步锁定差异的分子。转录组中优先关注一些与生殖发育、抗病抗旱胁迫相关的基因和转录因子家族,小RNA和phasiRNA可以优先关注已发表的文献中报道的小RNA家族以及差异特别明显的miRNA和phasiRNA,继而与降解组数据进行联合,会使得标书申请显得更加扎实。
所以前期用多少样本,需要几个比较组,涉及到几个组学技术,这边小编仅仅给出几个方案为大家参考:
测序组合:转录组测序、miRNA测序、降解组测序
分组方案:实验对照组vs样品处理组,总计2组
重复数量:转录组测序和miRNA测序,每组6个生物学重复。降解组测序,6个样本混合成一个样本测序
测序组合:转录组测序、miRNA测序
分组方案:实验对照组1组,不同时间段处理组3-5组
重复数量:转录组测序和miRNA测序,每组6个生物学重复。
最后也是祝愿各位老师基金标书能够高中!
1.Liu Y., et al. (2020) PhasiRNAs in Plants: Their Biogenesis, Genic Sources, and Roles in Stress Responses, Development, and Reproduction. Plant Cell, 32(10):3059
2.Deng P., et al. (2018) Biogenesis and regulatory hierarchy of phased small interfering RNAs in plants. Plant Biotechnology Journal, 16(5):965
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